Biotechnologie

Ort

Campus Offenburg, Raum B 156

Profil und Zielsetzung

Kennenlernen und Anwendung moderner molekularbiologischer Techniken

Ausstattung

Zellaufschluss:

  • Homogenisator MSK (Sartorius)
  • Homogenisator UltraTurrax

Nucleinsäureanalytik:

  • PCR-Gerät Mastercycler Personal (Eppendorf)
  • Real-Time PCR Realplex, gemietet (Eppendorf)
  • 7 Elektrophoresekammern, Sub-Cell GT (BioRad)
  • CabUVIS-Gerät mit UV-Lampe und Kamera (Desaga)
  • DCode Universal Mutation Detection System (Biorad)
  • Kapillarelektrophorese 270 (Applied Biosystems)
  • Qubit 2.0 Flourometer   

Proteinanalytik:

  • 2D-Elektrophorese Protean IEF (BioRad)

Mikroskopie:

  • Phasenkontrastmikroskope mit digitaler Bilddokumentation (Zeiss und Olympus)
  • Fluoreszenzmikroskop Axioskop 2plus (Zeiss)

Kultivierung:

  • Laminar Flow Sicherheitswerkbänke Klasse II (BDK)
  • Brutschränke
  • Autoklav Systec / 3850 EL
  • Zentrifugen Heraeus Biofuge Primor R
  • Zentrifuge Heraeus Thermo Elektron Fresco 17
  • Kühlbrutschrank Sorvall Heraeus BK 600
  • Gefriertrocknungsanlage Alpha 1-2 LD plus (Christ)

Photometrie:

  • Plate Reader FusionTM Absorption und Fluoreszenz (Packard Bioscience)
  • GENESYS 10S UV-VIS Spectrophotometer (Thermo-Scientific)
  • Metrohm 616 Photometer
  • UV/VIS Spektrometer Lambda 2 (Perkin Elmer)
  • Turbiquant Tübungsmessgerät (Merck)

Dünnschichtchromatographie:

  • TLC-Scanner CD 60 (Desaga)
  • J&M Tidas TLC 2010-Scanner
  • Desaga AS 30 Auftragegerät

Praktika und Übungen

  • Anwendung aktueller Techniken für die Isolierung und Aufreinigung von Nucleinsäuren (z. B. genomische, metagenomische DNA)
  • quantitative Bestimmung repräsentativer Nucleinsäureabschnitte mit Real-time PCR
  • ELISA, z. B. zum Nachweis von Gliadinen und verwandten Prolaminen in Nahrungsmitteln
  • Restriktionsverdau
  • Transformation von Plasmiden   

Praxisbezogene Anwendungen

  • Einbindung in praxisnahe Forschungsprojekte
  • Benutzung der Anlagen im Rahmen von Abschlussarbeiten